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113
prez.Rnw
113
prez.Rnw
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@ -54,10 +54,12 @@ alsoletter={.}
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\end{tikzpicture}
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}
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\makeatother
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\usepackage{xspace}
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\newcommand{\themename}{\textbf{\textsc{metropolis}}\xspace}
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\newcommand{\dd}{\mathrm{d}}
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\title{Projet: ANOVA Phylogénétique}
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\subtitle{Présentation du Mardi 26 Mars. 2024}
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@ -969,7 +971,8 @@ evemodel_dataframe$test_method <- as.factor(evemodel_dataframe$test_method)
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\item ANOVA phylo Satterthwait REML surselectionne des genes
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\item mais il y a des recoupements
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\item Lrt sous selectionne
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\item la méthode EVE c'est l'etat de l'art basé sur lrt
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\item la méthode EVE (Expression Variance and Evolution) c'est l'état de
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l'art basé sur lrt
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\end{itemize}
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}
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\end{frame}
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@ -1010,8 +1013,10 @@ evemodel_dataframe$test_method <- as.factor(evemodel_dataframe$test_method)
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\appendix
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\begin{frame}[allowframebreaks]{Code pour les simulations}
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Le code pour les simulations est disponible sur notre dépôt GitHub : \\
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\begin{frame}{Code pour les simulations}
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Le code pour les simulations, nos implémentations, le rapport et cette
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présentation est disponible sur notre dépôt GitHub : \\
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\begin{center}
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\url{https://github.com/Polarolouis/anova-phylogenetique-projet-msv/}
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\end{center}
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@ -1021,40 +1026,88 @@ Le code pour les simulations est disponible sur notre dépôt GitHub : \\
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Après relecture du rapport, nous avons pu constater que celui-ci contenait de
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nombreuses coquille. Nous vous présentons nos excuses.
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\end{frame}
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\begin{frame}{Ornstein-Uhlenbeck}
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Une autre possibilité de processus stochastique est le processus
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d'Ornstein-Uhlenbeck (\emph{mean-reverting process}) décrit par l'EDS suivante:
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$$\dd r_t = -\theta(r_t - \mu)+\sigma\dd W_t$$
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\begin{figure}
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\includegraphics[scale=0.20]{OrnsteinUhlenbeck3.png}
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\caption{Exemple de trajectoires de processus d'Ornstein-Uhlenbeck (tiré de Wikipédia)}
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\end{figure}
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\note{
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\begin{itemize}
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\item Ce processus tend avec le temps vers la valeur $\mu$ et peut donc
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modéliser l'existence d'un optimum pour le trait considéré.
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\item C'est le processus qui sous-tend le modèle EVE
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\item Et l'idée derrière que ce n'est pas le processus qui saute, mais
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l'optimum et il modélise donc deux niches différentes.
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\end{itemize}
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}
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\end{frame}
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\begin{frame}[allowframebreaks]{questions posables}
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- comment obtenir la stat de test pour anova phylo (Cholesky)
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- en quoi c'est un modèle mixte pour Satterthwaite ?
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- calcul de la Hessienne optim vs formule analytique, mettre formule analytique
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- Le LRT un modèle emboité blabla ?
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- sur quoi est basé EVEmodel ?
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- Mettre la démo du calcul de la Hessienne
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- Ornstein Uhleinbeck : qu'est ce que ça change par rapport au MB ? EVE dit optimum qui saute pas le processus qui saute
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Modélise deux niches différentes.
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Effet sur la moyenne masi ok , et sur la variance $K_\alpha$, ok pour satterthwaite masi prendre $\alpha$ en compte aussi
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Modifie la structure de variance et ajoute un paramètre $\alpha$, $K(\alpha)$, un saut sur l'optima.
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||||
- données de comptage transformées donc ok de modéliser par MB
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% - comment obtenir la stat de test pour anova phylo (Cholesky)
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% - en quoi c'est un modèle mixte pour Satterthwaite ?
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% - calcul de la Hessienne optim vs formule analytique, mettre formule analytique
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% - Le LRT un modèle emboité blabla ?
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% - sur quoi est basé EVEmodel ?
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% - Mettre la démo du calcul de la Hessienne
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% - Ornstein Uhleinbeck : qu'est ce que ça change par rapport au MB ? EVE dit optimum qui saute pas le processus qui saute
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||||
% Modélise deux niches différentes.
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% Effet sur la moyenne masi ok , et sur la variance $K_\alpha$, ok pour satterthwaite masi prendre $\alpha$ en compte aussi
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||||
% Modifie la structure de variance et ajoute un paramètre $\alpha$, $K(\alpha)$, un saut sur l'optima.
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% - données de comptage transformées donc ok de modéliser par MB
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En écologie ne travaille pas sur autant de traits, spécificité de la RNA-seq
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des milliers de données.
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% En écologie ne travaille pas sur autant de traits, spécificité de la RNA-seq
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% des milliers de données.
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LIMMA pour le cas non phylogénétique.
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Pour le cas phylogénétique \texttt{phylolimma}.
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% LIMMA pour le cas non phylogénétique.
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% Pour le cas phylogénétique \texttt{phylolimma}.
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Méthodes d'amélioration essayer de faire quelque chose qui prennent en compte
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plusieurs gènes à la fois
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- Est ce q'on pourrait faire une méthode comme LIMMA et faire Satterthwaite ?
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- c'est bizarre d'utiliser des mesures
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% Méthodes d'amélioration essayer de faire quelque chose qui prennent en compte
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% plusieurs gènes à la fois
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% - Est ce q'on pourrait faire une méthode comme LIMMA et faire Satterthwaite ?
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% - c'est bizarre d'utiliser des mesures
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Questions Mélina :
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- Qu’est qu’une ANOVA phylogénétique ? En quoi différent l’ ANOVA classique et l’ ANOVA phylogénétique ?
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- Comment modéliser l’évolution d’un trait continu sur un arbre (choix du processus dans l’ANOVA phylogénétique : savoir qu’il existe différentes manières de faire, soit on prend un brownien, soit on prend un OU … )
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||||
- Comment prendre en compte les erreurs de mesures dans l’anova phylogénétique ? (Car ici, dans le cadre de l’expression des gènes chez plusieurs espèces, on mesure plusieurs individus par espèce, on a donc une variabilité intra-espèce et une variabilité inter-espèces… il faut donc prendre en compte cela dans le modèle, et c’est d’ailleurs ce que fait EVE)
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||||
- Quel test effectuer pour tester si on a une différence d’expression significative entre différent groupes d’espèces ? (LRT ou test basé sur la stat de Fisher).
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||||
- Qu’est ce qu’un modèle mixte ? Comment estimer les paramètres dans un modèle mixte ? Quels tests stats ? Quel est le lien entre une anova phylo et un modèle mixte ?
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||||
- Pourquoi faire du REML au du ML classique ? Dans quel context?
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||||
- Pour l'analyse de données réelles, vous avez également été confrontés à un problème de tests multiples : puisque vous faites un test par gènes, et que vous avez des milliers de gènes, alors vous devez "corriger les p-values" pour extraire votre sous liste de "gènes différentiellement exprimés" (deux approches classiques : Bonferroni / BH )
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% Questions Mélina :
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% - Qu’est qu’une ANOVA phylogénétique ? En quoi différent l’ ANOVA classique et l’ ANOVA phylogénétique ?
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% - Comment modéliser l’évolution d’un trait continu sur un arbre (choix du processus dans l’ANOVA phylogénétique : savoir qu’il existe différentes manières de faire, soit on prend un brownien, soit on prend un OU … )
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% - Comment prendre en compte les erreurs de mesures dans l’anova phylogénétique ? (Car ici, dans le cadre de l’expression des gènes chez plusieurs espèces, on mesure plusieurs individus par espèce, on a donc une variabilité intra-espèce et une variabilité inter-espèces… il faut donc prendre en compte cela dans le modèle, et c’est d’ailleurs ce que fait EVE)
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% - Quel test effectuer pour tester si on a une différence d’expression significative entre différent groupes d’espèces ? (LRT ou test basé sur la stat de Fisher).
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% - Qu’est ce qu’un modèle mixte ? Comment estimer les paramètres dans un modèle mixte ? Quels tests stats ? Quel est le lien entre une anova phylo et un modèle mixte ?
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% - Pourquoi faire du REML au du ML classique ? Dans quel context?
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% - Pour l'analyse de données réelles, vous avez également été confrontés à un problème de tests multiples : puisque vous faites un test par gènes, et que vous avez des milliers de gènes, alors vous devez "corriger les p-values" pour extraire votre sous liste de "gènes différentiellement exprimés" (deux approches classiques : Bonferroni / BH )
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% Voici la reformulation de votre texte en utilisant l'environnement "itemize" pour qu'il soit copiable :
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\begin{itemize}
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\item Comment obtenir la stat de test pour ANOVA phylo (Cholesky)
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\item En quoi c'est un modèle mixte pour Satterthwaite ?
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\item Calcul de la Hessienne optim vs formule analytique, mettre formule analytique
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\item Le LRT un modèle emboîté blabla ?
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\item Sur quoi est basé EVEmodel ?
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\item Mettre la démo du calcul de la Hessienne
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\item Ornstein Uhleinbeck : qu'est-ce que ça change par rapport au MB ? EVE dit optimum qui saute pas le processus qui saute Modélise deux niches différentes. Effet sur la moyenne mais ok, et sur la variance $K_\alpha$, ok pour Satterthwaite mais prendre $\alpha$ en compte aussi Modifie la structure de variance et ajoute un paramètre $\alpha$, $K(\alpha)$, un saut sur l'optima.
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\item Données de comptage mais transformées donc ok de modéliser par MB
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\item En écologie, ne travaille pas sur autant de traits, spécificité de la RNA-seq des milliers de données.
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\item LIMMA pour le cas non phylogénétique. Pour le cas phylogénétique \texttt{phylolimma}.
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\item Méthodes d'amélioration essayer de faire quelque chose qui prennent en compte plusieurs gènes à la fois
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\begin{itemize}
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\item Est-ce qu'on pourrait faire une méthode comme LIMMA et faire Satterthwaite ?
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\item C'est bizarre d'utiliser des mesures
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\end{itemize}
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\item Questions Mélina :
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\begin{itemize}
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\item Qu’est-ce qu’une ANOVA phylogénétique ? En quoi diffère l’ANOVA classique et l’ANOVA phylogénétique ?
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\item Comment modéliser l’évolution d’un trait continu sur un arbre (choix du processus dans l’ANOVA phylogénétique : savoir qu’il existe différentes manières de faire, soit on prend un brownien, soit on prend un OU … )
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\item Comment prendre en compte les erreurs de mesures dans l’ANOVA phylogénétique ? (Car ici, dans le cadre de l’expression des gènes chez plusieurs espèces, on mesure plusieurs individus par espèce, on a donc une variabilité intra-espèce et une variabilité inter-espèces… il faut donc prendre en compte cela dans le modèle, et c’est d’ailleurs ce que fait EVE)
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\item Quel test effectuer pour tester si on a une différence d’expression significative entre différents groupes d’espèces ? (LRT ou test basé sur la stat de Fisher).
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\item Qu’est-ce qu’un modèle mixte ? Comment estimer les paramètres dans un modèle mixte ? Quels tests stats ? Quel est le lien entre une ANOVA phylo et un modèle mixte ?
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\item Pourquoi faire du REML au du ML classique ? Dans quel contexte?
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\item Pour l'analyse de données réelles, vous avez également été confrontés à un problème de tests multiples : puisque vous faites un test par gènes, et que vous avez des milliers de gènes, alors vous devez "corriger les p-values" pour extraire votre sous-liste de "gènes différentiellement exprimés" (deux approches classiques : Bonferroni / BH )
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\end{itemize}
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\end{itemize}
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\end{frame}
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\end{document}
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